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核酸纯化&胶回收

TD409-通用DNA纯化回收试剂盒

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TD409-50 50次 106.00元
TD409-200 200次 399.00元
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Q:问题

A,:可能的原因和建议的解决方案

低回收

² 确保琼脂糖完全溶解:

样品中可能有微小未溶解的琼脂糖球,会堵塞结合柱和将一些低盐,杂质带入最终的洗脱好的DNA中,并且降低柱的结合率。

² 凝胶溶解在60°C以上的温度下:

如果在较高的温度下溶解,DNA可能会变性,影响DNA回收率。为最佳结果,凝胶切片在37-55°C之间溶解。

² 制备不当/储存不当的DNA洗涤液:

确保在DNA洗涤缓冲液中加入了乙醇。盖住瓶子紧密防止随时间蒸发。

² 加入DNA洗脱缓冲液:

将洗脱缓冲液直接添加到纯化柱基质中,而不是添加到纯化柱的壁上。洗脱缓冲器对于≥10kbDNA,需要与基质接触至少1分钟。

² 不完全的洗脱:

DNA的洗脱依赖于pH值、温度和时间。对于大基因组DNA(≥50kb),将加热的洗脱缓冲液(60-70°C)应用于纯化柱上,并在洗脱前孵育2分钟。可进行连续洗脱以提升最终核酸量。这适用于DNA片段长度≥10kb

A260/A230比率

² 纯化柱尖被污染:




当从收集管中移除纯化柱时,要小心纯化柱的尖端不接触到废液。微量的盐会污染样品,导致低A260/A230。洗脱液中乙醇的残留污染也会干扰DNA的纯度。简石生物的核酸纯化柱设计可实现完全洗脱,无缓冲液残留(见下图)

用胶回收试剂盒纯化后的DNA,琼脂糖凝胶中出现多个条带。

² DNA Loading Dye的酸化作用:

大多数Loading Dye不含EDTA,由于微生物生长会使其酸化(pH≤4)。这种低pH值足以导致DNA降解。因此,如果是用水洗脱DNA,推荐使用含有1mM EDTA6X Loading Dye

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